产品货号：
WH0025
中文名称：
新型植物基因DNA组提取试剂盒（离心吸附柱法)
英文名称：
Plant genomic DNA rapid extraction kit
产品规格：
50次|200次
发货周期：
1～3天
产品价格：
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本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，提取多种植物组织中的基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料，高效、专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白。提取的基因组DNA片段大，可达40 kb，纯度高，质量稳定可靠。
产品特点：
·简单快速：1h内即可获得超纯的基因组DNA。
·无毒害：无需使用酚/氯仿抽提，操作安全。
·纯度高、质量好：100mg植物组织中可提取到3-30μg基因组DNA，OD260/OD280的值在1.7-1.9范围内。
下游应用：
· PCR、qPCR与多重PCR。
· RAPD、RFLP、AFLP、SSR等分子标记。
·文库构建、Southern杂交。
不同植物组织DNA提取得率：（样本量：100mg，OD260/OD280：1.7～1.9）
不同来源的植物材料中基因组会有差异，以上所有材料均为新鲜幼嫩叶片。
提取实例：
本试剂盒提取的各种植物基因组DNA电泳结果。
起始量：100mg叶片，100μl洗脱，3μl上样，琼脂糖凝胶浓度为1%，6V/cm，电泳20min，marker为λDNA/Hind III
1：大豆新鲜幼嫩叶片；
2：烟草新鲜幼嫩叶片；
3：小麦新鲜幼嫩叶片；
4：玉米新鲜幼嫩叶片；
试剂盒组成：
保存条件：室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10min，以溶解沉淀。
注意事项：（请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1．样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
2．缓冲液LP1可能发黄，并不影响提取效果。
3．若缓冲液LP1或LP2有沉淀析出，可在37℃水浴溶解，摇匀后使用。
4．所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心。
使用方法：
使用前请先在缓冲液LP3和漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。
1．处理材料：
取植物新鲜组织100mg或干重组织20 mg，加入液氮充分碾磨。加入400μl缓冲液LP1和6 μl RNase A（10 mg/ml)，旋涡振荡1 min，室温放置10min。
2.加入130 μl缓冲液LP2，充分混匀，旋涡振荡1 min。
3.12000rpm（~13400×g )离心5 min，将上清移至新的离心管中。
4.加入1.5倍体积的缓冲液LP3（例如500 μl的上清液加750 μl缓冲液LP3）（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），立即充分振荡混匀15 sec，此时可能会出现絮状沉淀。
5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，吸附柱CB3放入收集管中。
6.向吸附柱CB3中加入600 μl漂洗液PW （使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。
注意：如果吸附柱膜呈现绿色，向吸附柱CB3中加入500 μl无水乙醇，12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。
7.重复操作步骤6.
8.将吸附柱CB3放回收集管中，12000rpm（~13400×g)离心2 min，倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。
9.将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200 μl洗脱缓冲液TE，室温放置2-5 min，12000rpm（~13400×g )离心2 min，将溶液收集到离心管中。
注意：为增加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中，室温放置2 min，12000rpm （~13400×g )离心2 min。洗脱缓冲液体积不应少于50 μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率；且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。
DNA浓度及纯度检测：
1．得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
2．DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50 μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。
3．OD260/OD280比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。
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产品特点：
·简单快速：1h内即可获得超纯的基因组DNA。
·无毒害：无需使用酚/氯仿抽提，操作安全。
·纯度高、质量好：100mg植物组织中可提取到3-30μg基因组DNA，OD260/OD280的值在1.7-1.9范围内。
下游应用：
· PCR、qPCR与多重PCR。
· RAPD、RFLP、AFLP、SSR等分子标记。
·文库构建、Southern杂交。
不同植物组织DNA提取得率：（样本量：100mg，OD260/OD280：1.7～1.9）
| 植物材料 | 平均DNA产量 |
| 拟南芥 | 3～4μg |
| 小麦 | 25～30μg |
| 松树 | 25～30μg |
| 马铃薯 | 4～6μg |
| 番茄 | 10～15μg |
| 油菜 | 2～4μg |
| 烟草 | 20～25μg |
| 水稻 | 10～25μg |
| 大豆 | 20～30μg |
| 玉米 | 20～30μg |
不同来源的植物材料中基因组会有差异，以上所有材料均为新鲜幼嫩叶片。
提取实例：
本试剂盒提取的各种植物基因组DNA电泳结果。
起始量：100mg叶片，100μl洗脱，3μl上样，琼脂糖凝胶浓度为1%，6V/cm，电泳20min，marker为λDNA/Hind III
1：大豆新鲜幼嫩叶片；
2：烟草新鲜幼嫩叶片；
3：小麦新鲜幼嫩叶片；
4：玉米新鲜幼嫩叶片；
试剂盒组成：
| 组分 | 50T | 200T |
| 缓冲液LP1 | 25ml | 100ml |
| 缓冲液LP2 | 10ml | 40ml |
| 缓冲液LP3 | 21ml | 84ml |
| 漂洗液PW | 15ml | 50ml |
| 洗脱缓冲液TE | 15ml | 60ml |
| RNase A（10mg/ml) | 300μl | 1.25ml |
| 吸附柱CB3 | 50个 | 200个 |
| 收集管（2ml) | 50个 | 200个 |
保存条件：室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10min，以溶解沉淀。
注意事项：（请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1．样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
2．缓冲液LP1可能发黄，并不影响提取效果。
3．若缓冲液LP1或LP2有沉淀析出，可在37℃水浴溶解，摇匀后使用。
4．所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心。
使用方法：
使用前请先在缓冲液LP3和漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。
1．处理材料：
取植物新鲜组织100mg或干重组织20 mg，加入液氮充分碾磨。加入400μl缓冲液LP1和6 μl RNase A（10 mg/ml)，旋涡振荡1 min，室温放置10min。
2.加入130 μl缓冲液LP2，充分混匀，旋涡振荡1 min。
3.12000rpm（~13400×g )离心5 min，将上清移至新的离心管中。
4.加入1.5倍体积的缓冲液LP3（例如500 μl的上清液加750 μl缓冲液LP3）（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），立即充分振荡混匀15 sec，此时可能会出现絮状沉淀。
5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，吸附柱CB3放入收集管中。
6.向吸附柱CB3中加入600 μl漂洗液PW （使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。
注意：如果吸附柱膜呈现绿色，向吸附柱CB3中加入500 μl无水乙醇，12000rpm（~13400×g )离心30 sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。
7.重复操作步骤6.
8.将吸附柱CB3放回收集管中，12000rpm（~13400×g)离心2 min，倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。
9.将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200 μl洗脱缓冲液TE，室温放置2-5 min，12000rpm（~13400×g )离心2 min，将溶液收集到离心管中。
注意：为增加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中，室温放置2 min，12000rpm （~13400×g )离心2 min。洗脱缓冲液体积不应少于50 μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率；且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。
DNA浓度及纯度检测：
1．得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
2．DNA应在OD260处有显著吸收峰，OD260值为1相当于大约50 μg/ml双链DNA、40 μg/ml单链DNA。
3．OD260/OD280比值应为1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。
相关搜索：新型植物基因DNA组提取试剂盒（离心吸附柱法)，植物gDNA柱式提取试剂盒，柱式植物DNA柱式提取试剂盒，Plant genomic DNA rapid extraction kit